Diferencia entre revisiones de «Transcripción»

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  ** Señal de poliadenilación (AAUAAA) (Lodish ''et al.'', 2016).
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** Señal de poliadenilación (AAUAAA) (Lodish ''et al.'', 2016).
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== Regulación ==
 
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Revisión del 20:10 31 mar 2025

Transcripción
Información sobre la plantilla
Transcrpcion.jpg
Concepto:Proceso en el que se sintetiza ARN a partir de una plantilla de ADN, permitiendo la transferencia de información genética para la síntesis de proteínas (traducción).

La transcripción es un proceso celular esencial en el que se sintetiza una molécula de ARN complementaria a una secuencia de ADN, facilitando la expresión génica. El ARN resultante (llamado transcrito) sigue las reglas de complementariedad de bases.

Diferencias entre dominios biológicos

  • Bacterias:
    • Transcripción y traducción ocurren acopladas en el citoplasma (sin núcleo).
    • Velocidad: ~40 nucleótidos/segundo (Dulin et al., 2015).
  • Eucariotas:
    • La transcripción ocurre en el núcleo.
    • La traducción ocurre en el citoplasma.
    • Requiere procesamiento del ARN (ej. splicing).
Complementariedad de bases
Base en ADN Base en ARN
A U
T A
C G
G C

Etapas de la transcripción

Iniciación

  • Promotores:
    • Bacterias: Caja de Pribnow (TATAAT) en posición -10 (Pribnow, 1975).
    • Eucariotas: Caja TATA (TATAAA) en posición -25.
  • Factores de transcripción:
    • ARN polimerasa se une al promotor (Alberts et al., 2017).
    • En eucariotas: Complejo de iniciación con factores TFII.

Elongación

  • Formación de la burbuja de transcripción (~14 pb desenrolladas).
  • Síntesis en dirección 5' → 3'.
  • En eucariotas: Modificaciones co-transcripcionales (5' cap, poli-A).

Terminación

  • Bacterias:
    • Independiente de Rho: Horquilla GC + cola de uracilos.
    • Dependiente de Rho: Hexámero ρ reconoce secuencias "rut".
  • Eucariotas:
    • Señal de poliadenilación (AAUAAA) (Lodish et al., 2016).
    • Corte y adición de cola poli-A.

Regulación

  • Elementos cis: Secuencias reguladoras (enhancers/silencers).
  • Factores trans: Proteínas que se unen a elementos reguladores (Allis & Jenuwein, 2016).
  • Modificaciones epigenéticas (metilación, acetilación).

Técnicas de estudio

  • Pulso-caza: Uso de nucleótidos marcados (³H-uridina).
  • Run-on transcription: Mide transcripción activa.
  • RNA-seq: Secuenciación masiva de transcritos (Wang et al., 2009).

Fuentes

  • Alberts, B., Johnson, A., Lewis, J., Morgan, D., Raff, M., Roberts, K. & Walter, P. (2017). Molecular biology of the cell (6ª ed.). Garland Science. https://doi.org/10.1201/9781315735368
  • Lodish, H., Berk, A., Kaiser, C. A., Krieger, M., Bretscher, A., Ploegh, H., Amon, A. & Martin, K. C. (2016). Molecular cell biology (8ª ed.). W.H. Freeman. ISBN 978-1464183393.
  • National Center for Biotechnology Information. (2023). Eukaryotic transcription control. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK9904/ (Consultado el 31 de marzo de 2025).
  • Nature Education. (2014). Transcription: DNA to RNA. Scitable. https://www.nature.com/scitable/topicpage/transcription-dna-to-rna-393/ (Consultado el 31 de marzo de 2025).
  • Allis, C. D. & Jenuwein, T. (2016). The molecular hallmarks of epigenetic control. Nature Reviews Genetics, 17(8), 487-500. https://doi.org/10.1038/nrg.2016.59
  • Wang, Z., Gerstein, M. & Snyder, M. (2009). RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics. Nature Reviews Genetics, 10(1), 57-63. https://doi.org/10.1038/nrg2484
  • Pribnow, D. (1975). Nucleotide sequence of an RNA polymerase binding site at an early T7 promoter. Proceedings of the National Academy of Sciences, 72(3), 784-788. https://doi.org/10.1073/pnas.72.3.784
  • Dulin, D., Bauer, D. L. V., Malinen, A. M., Bakermans, J. J. W., Kaller, M., Morichaud, Z., Petushkov, I., Depken, M., Brodolin, K. & Kulbachinskiy, A. (2015). Pause sequences facilitate entry into long-lived paused states by reducing RNA polymerase transcription rates. Nature Communications, 6, 10157. https://doi.org/10.1038/ncomms10157