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Malacofauna en agroecosistemas de Cuba

2014-12-05T15:58:42Z

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== Introducción ==

Los [[moluscos]] constituyen el grupo más numeroso de invertebrados, después de los artrópodos, y muchas especies utilizan las plantas como recurso trófico. Su presencia en los agroecosistemas no solo perjudica a los cultivos por sus hábitos alimentarios, sino también a los humanos que se alimentan de las [[hortalizas]] y [[vegetales]] donde pueden hallarse algunos de estos [[moluscos]] que son hospederos intermediarios de parásitos intestinales, como los trematodos de los géneros Schistosoma Weinland y Fasciola Linneaus, y de nematodos Angiostrongylus Kaminsky.
En Cuba son escasos los estudios malacológicos aplicados a la agricultura a pesar de que en la actualidad estos organismos están calificados como plagas de las hortalizas de hoja en la [[agricultura]] urbana.
A pesar de que los trabajos de Sarasúa (1944), Bruner y Valdés (1953), Bruner et al. (1975) recogen la única información que existe hasta el momento con relación a los moluscos y su asociación con la vegetación cultivada, es necesario documentar los cultivos atacados por estos organismos y ampliar la información en este sentido.
Este trabajo se realizó con el objetivo de identificar las especies de [[moluscos]] asociados a agroecosistemas representativos de las provincias occidentales de Cuba.

== Materiales y Métodos ==

El estudio se ejecutó en el período 2005-2010 en organopónicos, huertos intensivos, viveros, semilleros y semiprotegidos de las provincias occidentales de Cuba (Tabla 1).

=== Tabla 1. Relación de las provincias y municipios donde se realizaron las recolectas ===
[[Archivo:Tabla_1_malacofauna.JPG]]

En cada uno de los sistemas visitados se realizó un recorrido por las áreas de cultivo para detectar la presencia de poblaciones de [[moluscos]] mediante la selección al azar en parcelas de 1 m2 Los individuos detectados se recolectaron en frascos plásticos o en bolsas pequeñas, se anotaron los datos del lugar, así como las plantas a las que se asociaban; en cada caso se definió si el molusco encontrado era fitófago o no, a partir del daño causado al cultivo.
En el laboratorio se limpiaron las superficies de las conchas con alcohol al 70 % para eliminar las impurezas y posteriormente proceder a su identificación. Para la clasificación de los especímenes se empleó el procedimiento de Aguayo y Jaume (1944), las claves taxonómicas de Pérez y López (2002), Barrientos (2003) y Fahy (2003), y se hicieron comparaciones con los ejemplares depositados en la colección malacológica del Instituto de Ecología y Sistemática.

== Resultados y discusión ==

Se detectaron 118 individuos pertenecientes a 11 familias, 14 géneros y 15 especies (Tablas 2 y 3), nueve de hábitos fitófagos y seis no fitófagos.
[[Archivo:Tabla_2_malacofauna.JPG]]
=== Tabla 2. Especies, localidades y plantas hospedantes de moluscos fitófagos detectados ===

Las familias de fitófagos con mayor representación en agroecosistemas fueron Subulinidae con tres especies, seguida de Lymnaeidae con dos representantes; las especies con mayor número de plantas hospedantes fueron P. griseola con 10 especies vegetales, seguida de O. pumilum, R. decollata y Z. auricoma havanensis asociadas a seis especies vegetales cada una.
En estos ecosistemas se observó que las especies R. decollada y P. griseola causan daños a los cultivos de acelga (Beta vulgaris subesp. vulgaris L.) y col china (Brassica rapa subsp. chinensis (L.) Hanelt), inclusollegan a consumir completamente estas plantas en lafase de postura.
En los muestreos se observaron algunas especies con características gregarias, como es el caso de los subulínidos R. decollata y S. octona, los cuales se concentran en pequeños grupos de hasta diez individuos.
Los caracoles no fitófagos de las familias Megalomastomidae y Helminthoglyptidae estuvieron representados por dos especies, mientras que Helicinidae, Camaenidae y Potamiidae presentaron una especie cada una.
Coinciden los resultados de este estudio con los obtenidos por Sarasúa (1944), donde los géneros Zachrysia Pilsbry, Praticolella von Martens, Rumina Risso, Subulina Beck y Opeas Albers se asocian a las áreas antropizadas. Estos constituyen los moluscos más representativos de las áreas cultivadas para los ecosistemas muestreados.
Según Bruner y Valdés (1953), las especies Z. auricoma y R. decollata atacan a los cultivos de tomate y a laberenjena. En el presente trabajo no se observó incidenciade estas especies en los cultivos antes mencionados;sin embargo, estas habitan y consumen otrasseis especies vegetales (Tabla 2).
En los muestreos se observó al caracol G. cubensis al alimentarse de los tallos del cultivo del arroz (Oriza sativa L.). Este molusco se informó para el cultivo del berro (Nasturtium officinale R. Brown) por Abdul et al. (2009), donde es muy importante por ser el principal transmisor de Fasciola hepatica a animales y a humanos.
Las especies pertenecientes a la familia Succinidae tienen como hospedantes algunos cultivos. Resultados semejantes observó Monge (1997), que enumera entre otros cultivos el tilo (Justicia pectoralis Jacquin) como hospedantes de especies de estas familias.
Con este estudio se comprobó que el caracol vagabundo P. griseola está presente en muchas áreas agrícolas.
Se observó su presencia y daños en 10 cultivos (Tabla 2); por tanto, es la especie con mayor número de plantas hospedantes encontradas, y en estos caracoles en los organopónicos son muy abundantes, lo cual coincide con los resultados de Milera y Correoso (2003).
El segundo lugar respecto a la cantidad de hospedantes lo ocupó S. octona. Este subulínido posee una concha turriculada que le posibilita enterrarse, evitar la desecación, garantizar el éxito en su reproducción y la permanencia en el ecosistema. Este caracol fue encontrado en áreas donde el suelo se encontraba muy húmedo. Esto coincide con los resultados de D’Ávila et al. (2004), donde plantea que el factor humedad y sustrato influye en el crecimiento y la reproducción de estos moluscos.
También en los muestreos se hallaron caracoles de hábitos no fitófagos (Tabla 3) representados por cinco familias, cinco géneros y seis especies; entre ellos se encuentran los géneros Chondropoma Pfeiffer, Jeanneretia Pfeiffer, Caracolus Montfort y Farcimen Troschel. Estos [[moluscos]] pueden verse frecuentemente en áreas cultivadas, pero sus hábitos alimenticios se limitan al consumo de líquenes, hongos y detritus.
Las familias Helicinidae y Megalomastomidae se informan por primera vez para las áreas cultivadas; sin embargo, Espinosa et al. (2009) afirman que los helícidos se encuentran en las ramas de árboles y arbustos, y raramente en el suelo o entre las piedras. En cuanto a los hábitos alimentarios de los miembros de los megalomastomidos, estos mismos autores aseveran que son esencialmente micófagos.
[[Archivo:Tabla_3_malacofauna.JPG]]
=== Tabla 3. Especies y localidades de moluscos no fitófagos detectados ===

Se registra una nueva localidad para el género Farcimen Troschel. Hasta el momento solo se registrapor Espinosa y Ortea (1999) para La Habana en el municipio de Playa, antiguo Balneario Cívico Militar, y correspondió a la subespecie Farcimen gundlachi micaeli. Este espécimen fue hallado entre la hojarascay disímiles plantas ornamentales.
Anteriormente Espinosa y Ortea (1999) informan a S. octona en los jardines y parques de toda Cuba, pero pueden encontrarse fácilmente también en muchas áreas cultivadas de la agricultura urbana. Al decir de esta especie, Sarasúa (1944) la califica como el caracol más común de los ambientes domésticos. Todavía hoy es un [[molusco]] muy común, y gracias al accionar del hombre se extendió su hábitat. Asimismo se amplió la distribución del caracol R. decollata. A este último Espinosa y Ortea (1999) lo ubican en los jardines de las provincias occidentales, a excepción de Pinar del Río e Isla de la Juventud. En este estudio se observó que también está presente en los agroecosistemas.

== Conclusiones ==

• Se hallaron un total de nueve especies con hábitos fitófagos y seis no fitófagos.

• En este estudio el molusco con mayor número de plantas hospedantes asociadas fue P. griseola con 10 especies vegetales.

• La familia de [[moluscos]] con mayor representación en los agroecosistemas fue Subulinidae, con tres especies.

• Se amplía las localidades para el género Farcimen Troschel en La Habana, y para las especies S. octona y R. decollata se constata su presencia no solo en losjardines, sino también en los agroecosistemas.

== REFERENCIAS ==

*Abdul, S. H.; I. Figueira; C. Madera; C. Olaizola; R. Contreras; M. A. Sánchez; C. Colmenares; M. L. Safar: «Estudio de la fasciolopsis hepática humana y parasitosis intestinales en el caserío Mesa Arriba del municipio de Carache, estado Trujillo, Venezuela», Revista de la Sociedad Venezolana de Microbiología 29: 128-132, 2009.

*Aguayo, C.; M. L. Jaume: «Guía para la descripción de moluscos gasterópodos», Rev. Soc. Malacológica Carlos de la Torre 2 (1-2): 41-46, Cuba, 1944.

*Alfonso, M.; R. Avilés; M. Álvarez; Y. Lorenzo; Y. Ortiz; V. Rodríguez: «Plantas molusquicidas de Cuba», Rev. Protección Vegetal 15 (2): 69-72, Cuba, 2000.

*Barrientos, Z.: «Aspectos básicos sobre la clasificación, recolección, toma de datos y conservación de los moluscos», Rev. Biol. Trop. 51 (Suppl. 3): 13-30, Costa Rica, 2003.

*Blackshaw, R.: Slug and Snail Pests in Agriculture. British Crop Protection Council Symposium Proceedings no. 66. Crop Protection, vol.16, no.7, 1997.

*Bruner, S.; L. Scaramuzza; A. Otero: Catálogo de los insectos que atacan a las plantas económicas de Cuba, 2.a ed., Academia de Ciencias de Cuba, La Habana, 1975.

*Bruner, S.; F. Valdés: «Medios para combatir los principales insectos que atacan a las hortalizas», Estación Agronómica Santiago de las Vegas, Cuba. Circular no. 88, pp. 23-47, diciembre 1953.

*Companioni, N.; A. Rodríguez; M. Carrión; M. Alonso; R. M. Ojeda; E. Peña: «La agricultura urbana en Cuba: su participación en la seguridad alimentaria», Conferencias. III Encuentro Nacional de Agricultura Orgánica, Villa Clara, pp. 9-13, Cuba, 1997.

*Cowie, R. H.: «Can Snails Ever Be Effective and Safe Biocontrol Agents?», International Journal of Pest Management 47 (1): 23-40, 2001.

*D’Ávila, S., Dias, R.J.P., Bessa, E.C.A. and Daemon, E. «Resistência à dessecação em três espécies de moluscos terrestres: aspectos adaptativos e significado para o controle de helmintos». Rev. Bras. Zoociências. 6 (1), 115-127. 2004. Discoverlife: «Subulina octona (Bruguière, 1792)», http://www.discoverlife. org/mp/20q?guide=Molluscs (Consulta: 4 de agosto de 2010).

*Espinosa, J.: «Estudian incidencia de moluscos en ecosistemas cubanos », Electrónica fácil, 13 de febrero de 2007, http://www.electronicafacil. net/archivo-noticias/ciencia/Article6709.html, (Consultado: 19 de marzo de 2008).

*Espinosa, J.; J. Ortea: Moluscos terrestres del archipiélago cubano, Ed. La Universidad, Avicennia, Suplemento 2, pp 1-137, Oviedo, España, 1999.

*Espinosa, J.; J. Ortea: Moluscos terrestres de Cuba, Espartacus Foundation- Sociedad de Zoología de Cuba, UPC Print, Vaasa, Finlandia, 2009.

*Fahy, N. E.: «Clave de los géneros de moluscos terrestres mexicanos usando caracteres conquiológicos», Rev. Biol. Trop. 51 (3): 473-482, Costa Rica, 2003.
*Ferrer, J.; G. Perera; M. Yong: «Life Tables of Galva cubensis and Pseudosuccinea columela, Intermediate Hosts of Fasciola hepatica in Cuba», J. Med. Appl. Malaco. 1: 189-94, Chile, 1990.

*Milera, F.; M. Correoso: «Los moluscos terrestres y fluviales de la Isla de la Juventud, Archipiélago de los Canarreos, Cuba», Cocuyo 13: 15-18, Cuba, 2003.

*Monge, J.: Moluscos de importancia agrícola y sanitaria en el trópico: la experiencia costarricense, 1.a ed., Editorial de la Universidad de Costa Rica, 1997.

*Núñez, F.: «Aspectos parasitológicos de la infección por Angiostrongylus cantonensis», Aportes cubanos al estudio del Angiostrongylus cantonensis, Ed. Academia, cap. 2, La Habana, 2006.

*Pérez, A.; A. López: Atlas de los moluscos gasterópodos continentales del Pacífico de Nicaragua. Ed. Universidad Centro Americana, Nicaragua, 2002.

*Sarasúa, H.: «Los moluscos de los jardines cubanos», Rev. Soc. Malacológica Carlos de la Torre2 (2): 59-63, Cuba, 1944.

*Trujillo, Z.; E. Bell; A. Sigarroa; R. Pérez; C. Murguido; J. Barquín: «Estudios preliminares en la obtención de cebos para el combate de caracoles», Fitosanidad 3 (4): 43-47, Cuba, 1999.

*Vázquez, L. L.; E. Fernández; J. Lauzardo; T. García; J. Alfonso; R. Ramírez: Manejo agroecológico de plagas en fincas de la agricultura urbana (MAPFAU), Ed. CIDISAV, La Habana, 2005.

== Fuentes ==

* [http://www.inisav.cu Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal] 

[[Category:Comportamiento_animal]][[Category: Moluscos]]

Archivo:Tabla 2 malacofauna.JPG

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Archivo:Tabla 1 malacofauna.JPG

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BIOFIE: Una experiencia positiva en ayuda a las semillas.

2014-12-05T14:43:35Z

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{{Definición
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== Introducción ==

Los sistemas biológicos toman del sol las energías fundamentales para sus procesos químicos. La radiación solar que llega a la superficie terrestre está compuesta en el 59% de radiación infrarroja (IR), en el 40% de luz visible y en el 1% de [[radiación ultravioleta]] (UV). Ello le confiere efectos diversos: fototérmicos, fotoluminosos y fotoquímicos, así como le debe la vida en nuestro planeta.
El lugar donde germina la semilla determina la disponibilidad de luz, agua y nutrientes. Entre esos factores, la luz cumple un papel principal a lo largo del [[ciclo biológico]]. Este sirve de carburante en la fotosíntesis, la que posibilita la formación y desarrollo de hojas, tallos, raíces y flores.
La radiación solar consta de diferentes colores, acordes con las distintas longitudes de onda en que se transmite. Para captarlos, las plantas poseen receptores especiales, los pigmentos fotosensibles o fotorreceptores. De estos, clorofilas y carotenoides absorben la gama que va del azul al rojo, implicada en la [[fotosíntesis]]. No obstante en el control de la fotomorfogénesis participan otros fotorreceptores que captan y transmiten señales de diferentes regiones del espectro: el receptor de UV-B; los que captan UV cercana y azul, además de los que perciben la luz roja y roja lejana (Martínez et al., 2008).
Actualmente es notable la cantidad de información disponible sobre el efecto de la luz en la germinación. La fotoinducción o fotoinhibición de la germinación es uno de los casos más claros del control de un proceso fisiológico por un factor ambiental.
Son tres las principales bandas del espectro lumínico que tienen acción sobre la [[germinación]]: la correspondiente a la franja de los 660 nm (rojo), la de los 730 nm (rojo lejano) y la luz comprendida entre 400 y 500 nm (azul), con efectos mucho menos estudiados, pero de reconocido estímulo bactericida. Tanto el rojo como el rojo lejano son absorbidos por un compuesto denominado fitocromo, que es una cromoproteína que actúa como sensor. Este pigmento en su forma activa es inductor de la germinación, e interviene en procesos de permeabilidad, activación de enzimas y expresión genética. La reacción opuesta ocurre bajo el efecto del rojo lejano. Estas dos formas del fitocromo corresponden a cada uno de sus picos de absorción de luz.
Otro elemento a tener en cuenta es el efecto de sedación que ejerce la luz verde, cuestión a valorar en el caso de las [[semillas]] estresadas y que puede aportar nuevos beneficios a la [[germinación]].
Sobre la base de lo anterior y teniendo en cuenta que hoy, unos de los principales problemas que afecta la agricultura es el bajo porcentaje de las semillas, se desarrolló el sistema BIOFIE para el tratamiento a las semillas mediante el empleo de diodos emisores de luz de alto brillo de diferentes de longitudes de onda en los rangos del rojo, azul y verde. Este sistema es el resultado de investigaciones previas desarrolladas en un trabajo de la Cátedra Científica de Ciencias para la Vida, proyecto conjunto del [[Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal]] (INISAV) y el Instituto Superior Politécnico José Antonio Echeverría (ISPJAE).

== Características del equipo BIOFIE ==

BIOFIE es un equipo confeccionado por el Departamento de Prototipos de la Facultad de Ingeniería Eléctrica del ISPJAE, en colaboración con el Instituto Kongang Jim Wanchon (IKJW) de la Ciudad de Pasto, República de Colombia, atendiendo a una solicitud realizada por la Cátedra de Ciencias para la Vida y que reúne las experiencias obtenidas en investigaciones realizadas en el INISAV en el tratamiento de [[semillas]].
[[Archivo:Equipo_BIOFIE.JPG]]

Figura 1. Equipo BIOFIE, fabricado en Facultad de Ingeniería Eléctrica del ISPJAE
Por su fácil manipulación, sus características constructivas y alimentación por corriente directa con baterías AA, o adaptadores a baterías de 12 volts; es muy útil para la Agricultura, incluso en condiciones de catástrofes, lo que le da posibilidades para su implementación por la Defensa Civil.

=== Aplicaciones de BIOFIE ===
- Aumentar la velocidad de germinación de las [[semillas]].

- Aumentar el porciento de germinación de las [[semillas]].

- Mejorar las dimensiones de las plántulas.

- Obtener plantas y frutos más robustos.

=== Efectos biológicos en las semillas y plántulas ===
- Aumento de la calidad.

- Mayor resistencia a la sequía.

- Resistencia al ataque de plagas.

La investigación consistió en el tratamiento de [[semillas]] de [[habichuela]] (Vigna unguiculata L. var. Cantón) y [[pepino]] (Cucumis sativus L. var. Puerto Padre) con un sistema de diodos de luz roja, durante diferentes tiempos; se utilizaron como testigo [[semillas]] del mismo lote sin tratar.
Se empleó un diseño completamente aleatorizado con cinco réplicas por tratamiento y 10 [[semillas]] en cada una. Los resultados obtenidos fueron sometidos a un análisis de varianza y las medias se compararon por el test de significación de Tukey. El estudio se dividió en dos fases: una de siembra y germinación en placas Petri en un local con control de temperatura y luz; y otra, post-germinación. En esta segunda fase se midió la altura de la plántula (cm) y la longitud de la raíz principal (cm).

== Efectos de los tratamientos en las semillas de habichuela ==

Las [[semilla]]s de [[habichuela]] tuvieron un alto porcentaje de [[germinación]] (95%), por lo que no hubo diferencias significativas entre las irradiadas con luz roja con respecto al testigo, no obstante, se apreció mayor velocidad de germinación en las irradiadas durante 25 minutos
[[Archivo:Germinacio_de_semillas.JPG]]

Figura 2. Germinación de las semillas de habichuela (%)

Con relación a la altura de las plántulas, para las [[semillas]] de [[habichuela]], se observan diferencias significativas entre el testigo y las demás variantes, las cuales no difirieron entre sí. En el indicador longitud de la raíz, se obtienen diferencias significativas en los tratamientos, manifestándose los mejores resultados en los tratamientos de 20 y 25 minutos de exposición (tabla 1).

=== '''Tabla 1. Dimensiones del tallo y la raíz de las plántulas de habichuela tratadas con luz roja con diferentes tiempos de exposición''' ===
{| class="wikitable" border="1"
|-
! Tratamientos
! Longitud del tallo (cm)
! Longitud de la raíz (cm)
|-
| Testigo
| 14.7526 b
| 4.9316 c
|-
| 5 min
| 17.8205 a
| 6.4568 bc
|-
| 10 min
| 17.9415 a
| 6.6083 bc
|-
| 15 min
| 18.1711 a
| 6.7053 bc
|-
| 20 min
| 18.8111 a
| 8.7206 a
|-
| 25 min
| 19.0912 a
| 9.2073 a
|}
''Medias con letras diferentes difieren estadísticamente para un nivel de significación de p<0,05, según Test de Tukey.''

== Efectos de tratamiento en las semillas de pepino ==

En el caso de las [[semillas]] de [[pepino]], que sí presentaban un bajo porciento de germinación (<50%), se pudo apreciar una diferencia significativa entre las irradiadas con luz roja y el testigo
[[Archivo:Semillas_germinadas.JPG‎]]

Figura 3. Germinación de las semillas de pepino (%)

En correspondencia con estos resultados, De Souza et al. (1999); Ramírez, (2006); Álvarez et al. (2011) informaron un comportamiento similar al tratar [[semillas]] de [[hortalizas]] con métodos físicos estimulantes como son las bajas dosis de radiaciones ionizantes, los campos magnéticos y el láser de baja potencia. Estos autores plantean que las [[semillas]] con alto poder germinativo (superior al 85 %) reaccionan de forma débil al tratamiento con métodos físicos y que la estimulación de este indicador, generalmente se logra cuando las semillas presentan problemas de latencia o están sometidas a condiciones estresantes que retrasan o inhiben su germinación.
Al comparar la altura de la plántula en los diferentes tratamientos se encontraron diferencias estadísticamente significativas entre las irradiadas y el testigo, con mayores dimensiones entre los 20 y 25 minutos. Sin embargo, las dimensiones de las raíces no difirieron del testigo, aunque los mayores valores estuvieron entre los 20 y 25 minutos (tabla 2).
=== '''Tabla 2. Dimensiones del tallo y la raíz de las plántulas de pepino tratadas con luz roja con diferentes tiempos de exposición''' ===
{| class="wikitable" border="1"
|-
! Tratamientos
! Longitud del tallo (cm)
! Longitud de la raíz (cm)
|-
| Testigo
| 5,3750 c
| 4.60 a
|-
| 5 min
| 5,6978 bc
| 4.74 a
|-
| 10 min
| 5,9537 abc
| 4.86 a
|-
| 15 min
| 6,1524 ab
| 5.35 a
|-
| 20 min
| 6,5895 a
| 5.69 a
|-
| 25 min
| 6,6405 a
| 5.89 a
|}
Medias con letras diferentes difieren estadísticamente para un nivel de significación de p<0,05, según Test de Tukey.

== Conclusiones ==

Los resultados anteriores confirman que, de los parámetros estudiados, la altura de las plántulas es la magnitud más apropiada para evaluar el efecto biológico relacionado con la estimulación del crecimiento de las plántulas mediante luz roja en condiciones de laboratorio, resultado que concuerda con los obtenidos por De Souza et al. (1999) utilizando el campo magnético como agente físico estimulante.
El efecto estimulador de la luz roja sobre las estructuras biológicas ha sido atribuido a diferentes mecanismos, tales como: el incremento de la actividad enzimática (De Souza et al. 1999, Torres et al. 2008) y el aumento de la eficiencia de los procesos relacionados con la división celular (Pittman, 1977). Sin embargo, la mayoría de los autores coinciden en afirmar que esto se debe a cambios que se producen en la permeabilidad de las membranas y en la sensibilidad de los mecanismos de transporte a través de las mismas (Ghole, 1986).
Los resultados alcanzados, al irradiar con luz roja de 660 nm con diodos de alta eficiencia, en tiempos y condiciones ambientales controladas mostraron en las semillas irradiadas una mayor velocidad de germinación; incrementos en los porcentajes de germinación en las semillas con problemas de latencia o estrés; así como incrementos en altura de la plántula y longitud de la raíz, en las [[semillas]] irradiadas de las dos especies de plantas estudiadas.

== Bibliografía ==

*Álvarez, A.; Ramírez, R.; Chávez, L.; Camejo, Y.; Licea, L.; Porras, E.; García, B. (2011). Efecto del tratamiento de semillas con láser de baja potencia, sobre el crecimiento y rendimiento en plantas de tomate (Solanum lycopersicum L.). Revista ITEA. Información técnica económica agrarian, 107 (4), 290-299.
*De Souza, A. y D. Garci. 1999. Efecto del tratamiento magnético de semillas de tomate (Lycopersicon esculentum Mill.) sobre la germinación y el crecimiento de las plántulas. Investigación Agronómica de Protección Vegetal 14(3), 437- 444.
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*Ramírez, R. (2006). Efecto del tratamiento de semillas con dosis estimulantes de rayos X en el cultivo del tomate (Lycopersicon esculentum Mill.). Tesis presentada en opción al Grado de Doctor en Ciencias Agrícolas. INCA. La Habana. 130 pp.
*Torres, C.; Díaz, J.E. y Cabal, P.A. (2008). Efecto de campos magnéticos en la germinación de semillas de arroz (Oryza sativa L.) y tomate (Solanum lycopersicum L.). Universidad Nacional de Colombia. Agronomía Colombiana, 26 (2), 177-185. Disponible en: http://www.scielo.org.co/scielo.php?pid=S0120-99652008000200002&script=sci_arttext .

== Fuente ==

*[[Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal]]

[[Category:Semillas]]

Archivo:Semillas germinadas.JPG

2014-11-26T13:54:58Z

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== Estado de copyright: ==

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Archivo:Germinacio de semillas.JPG

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== Estado de copyright: ==

== Fuente: ==

Archivo:Equipo BIOFIE.JPG

2014-11-26T13:48:44Z

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== Fuente: ==

Patogenicidad de hongos en el cultivo de la papa

2014-10-22T20:59:26Z

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|nombre= Patogenicidad de hongos en el cultivo de la papa.
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|tamaño=
|concepto=
}}

== INTRODUCCIÓN ==

El uso de insecticidas químicos para el control de T. palmi ha sido una práctica ampliamente utilizada a nivel mundial; sin embargo, el elevado precio que tienen en el mercado, la tendencia internacional a disminuir la carga tóxica en la agricultura, la contaminación ambiental y el escaso número de moléculas capaces de alcanzar la efectividad esperada han conducido a la búsqueda de nuevas alternativas de control.

Parker et al. (2011) realizaron experimentos con diferentes aislados de los hongos entomopatógenos M. anisopliae y B. bassiana colectados en campo al infestar este trips. Por su parte, Proprawski y Wraight (2000) refieren que se han descubierto numerosos organismos patógenos con capacidad de control biológico contra las plagas de insectos, incluidos los que atacan la papa.

En Cuba el uso de bioplaguicidas obtenidos de hongos entomopatógenos para el control de plagas se ha convertido en una práctica difundida entre los agricultores. Por ello este método fue factible de transferir al control de T. palmi en el cultivo de la papa. Por otra parte, el control biológico es una de las alternativas que se han investigado en diversas regiones del mundo, y se ha demostrado hasta el presente que puede constituir un componente importante del Manejo Integrado de Plagas.

Algunos patógenos de insectos tienen numerosas ventajas, entre las que se incluyen menor impacto directo sobre parásitos, parasitoides y depredadores invertebrados, la ausencia de residuos tóxicos y menor contaminación al ambiente, entre otras [Kaya y Lacey, 2000].
Elósegui y Elizondo (2010) estudiaron el efecto in Vitro de los hongos entomopatógenos M. anisopliae, L. lecanii y B. bassiana, donde obtuvieron un porcentaje de germinación superior al 95 %.

En condiciones de campo existen pocos resultados experimentales que validen la eficacia de los hongos entomopatógenos. Por ello se desarrolló este estudio con el objetivo de evaluar su efectividad para el control de T. palmi en el cultivo de la papa.

== MATERIALES Y MÉTODOS ==

El experimento se realizó en áreas agrícolas del Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, ubicado en el municipio de San José de Las Lajas, provincia de Mayabeque.

Las parcelas experimentales se sembraron el 29 de diciembre de 2003, con la variedad Chieftain a una distancia de siembra de 0,90 m x 0,25 m. Se utilizó un diseño de bloques al azar con cuatro variantes y cuatro réplicas. El área de cada parcela fue de 18 m2. Las labores de cultivo se realizaron según el Instructivo Técnico del Cultivo y el riego fue por aspersión con una norma de 25 mm semanales.

Los bioplaguicidas cumplieron con los parámetros de calidad de concentración de 109 conidios/mL, viabilidad del 97% y virulencia del 95%.

Las variantes utilizadas en el experimento fueron M. anisopliae a una dosis de 1,7 x 1013 conidios/ha, L. lecanii y B. bassiana a 1,5 x 1013 conidios/ha, así como un testigo tratado con agua.

Las aplicaciones se realizaron de cuatro a seis de la tarde, para lo cual se utilizó una mochila de motor con una entrega de caudal 1 L/min y velocidad del paso del operador 0,4-0,6 m/s, de acuerdo con lo orientado por Hernández (2010). Una vez calibrado el equipo se obtuvo un volumen promedio de 400 L/ha como solución final.

Las evaluaciones comenzaron a partir de la brotación del cultivo y se iniciaron los tratamientos cuando se detectó la presencia de T. palmi. Se realizaron siete aplicaciones en un intervalo de siete días y un conteo a los tres días después de cada tratamiento. Se colectaron 10 hojas de los surcos centrales por parcela y se trasladaron en bolsas de polietileno al Laboratorio de Entomología del Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal para su observación bajo el microscopio estereoscopio con 20X. Se registró la cantidad de adultos y larvas de primero y segundo estadio y se calculó el promedio por hoja, según la metodología propuesta por Jiménez et al. (2000).

Se calculó el promedio de adultos y de ninfas por estadio, los datos de los conteos se transformaron a X = x +1 y fueron sometidos a análisis de varianza. Se establecieron las diferencias entre las variantes según la prueba de Tukey para p < 0,05, para lo que se utilizó el paquete de diseños experimentales [Olivares, 1994]. Se calculó el porcentaje de mortalidad por variante según la fórmula de Abbott [Ciba-Geigy, 1981].

Durante el ciclo del cultivo se registraron los valores de temperatura, humedad relativa y precipitaciones de la Estación Meteorológica Tapaste, municipio de San José de las Lajas. Con respecto al rendimiento, se cosecharon los dos surcos centrales de cada parcela, se determinó el peso de los tubérculos en kilogramos, con procedimientos similares a lo realizado por Salomón et al. (2004), y se expresó en tonelada por hectárea. Los datos obtenidos se sometieron a análisis de varianza y se establecieron las diferencias entre las variantes según la prueba de Tukey para p < 0,05 [Olivares, 1994].

== RESULTADOS Y DISCUSIÓN ==

Los tres hongos entomopatógenos redujeron la población de T. palmi y fueron diferentes al testigo sin tratamiento, lo que quedó demostrado en el análisis estadístico. M. anisopliae produjo la mayor disminución de ninfas de primer estadio y resultó diferente a L. lecanii y B. bassiana; sin embargo, para las ninfas de segundo estadio fueron similares a M. anisopliae y L. lecanii, y diferentes a B. bassiana. En el caso de los adultos, M. anisopliae resultó diferente al resto de las variantes y al testigo sin tratamiento. La disminución causada por este hongo entomopatógeno sobre los tres estadios muestra mayor efecto sobre la población de la plaga (Tabla 1).

Alatorre (2000) indicó que los insecticidas microbianos son más efectivos cuando son aplicados sobre poblaciones consistentes en ninfas de primer estadio, lo que no se corresponde con los resultados de este experimento, ya que además se demostró que M. anisopliae, L. lecanii y B. bassiana actuaron sobre ninfas de segundo estadio y adultos de T. palmi.

=== Tabla 1. Efecto de los hongos entomopatógenos M. anisopliae, L. lecanii y B. bassiana sobre la población de T. palmi. ===

{| class="wikitable" border="1"
|-
! Variantes
! Dosis
(conidios/ha)
! Promedio de los conteos
de la cantidad
de insectos
|-
!
!
! Ninfa 1
! Ninfa 2
! Adulto
|-
| M. anisopliae
| 1,7 x 1013
| 4,5 c
| 9,5 c
| 4 c
|-
| L. lecanii
| 1,5 x 1013
| 8 b
| 15 c
| 5 bc
|-
| B. bassiana
| 1,5 x 1013
| 9,5 b
| 25 b
| 8 b
|-
| Testigo
| –
| 20,2 a
| 39,6 a
| 15 a
|-
| C. V. (%)
|
| 21,35
| 20,33
| 20,15
|-
| Ex
|
| 8,87
| 2,61
| 1,20
|}

La mortalidad promedio calculada para todo el ciclo de tratamientos corresponde con el valor más alto sobre el efecto de la población. El porcentaje de mortalidad en la variante tratada con M. anisopliae osciló en un rango del 73,3 al 77,7 %, donde el mayor valor lo alcanzaron las ninfas de primer estadio. En el tratamiento con L. lecanii el mayor porcentaje correspondió a los adultos (66,6 %). En B. bassiana los valores fluctuaron respecto a los tres estadios y el porcentaje más alto de mortalidad correspondió para las ninfas de primer estadio con el 52,9 % (Fig. 1).

[[Archivo:Fig_1_patoge..JPG]]

Figura 1. Mortalidad de T. palmi según estadio de desarrollo con los hongos entomopatógenos M. anisopliae, L. lecanii y B. bassiana.

En la Florida, Castiñeiras et al. (1996) obtuvieron resultados acerca del potencial de B. bassiana, pero solamente el 24 % de infección sobre ninfas de T. palmi en hojas de pepino. Por otra parte, Ehident y Guarín (2003) realizaron estudios en Colombia sobre la patogenicidad de B. bassiana y registraron un efecto significativo en la mortalidad de T. palmi con valores del 40 %. Estos resultados son similares con los obtenidos en este experimento, puesto que se obtuvieron valores entre el 36,8 y el 52,9 % de mortalidad.

En Cuba Trujillo et al. (2003) obtuvieron una mortalidad mayor del 60 % contra ninfas y adultos de T. palmi en pepino (Cucumis sativus L.) tratado con M. anisopliae y L. lecanii. Resultados semejantes obtuvieron Cuthbertson et al. (2005) en Inglaterra, cuando hallaron alta mortalidad para las ninfas de T. palmi con el hongo entomopatógeno L. lecanii en condiciones de laboratorio, sin diferencia significativa entre plantas de pepino (C. sativus) y pimiento (Capsicum annuum L.), lo que coincide con los resultados en este ensayo sobre el cultivo de la papa (Fig. 1).

El rendimiento presentó valores altos para todas las variantes, lo que estuvo relacionado con las labores culturales que recibió el cultivo. Entre las variantes tratadas no se encontraron diferencias significativas en el rendimiento, con valores superiores a 30 t/ha, pero sí respecto al testigo, que alcanzó 28,2 t/ha. Esto indica que en las parcelas tratadas con bioplaguicidas la población se mantuvo con un nivel de daño por debajo del que alcanzó la variante sin tratamiento (Fig. 2).

[[Archivo:Fig_2_patoge..JPG]]

Figura 2. Efecto de los tratamientos sobre el rendimiento de la papa.

En la literatura consultada no se encontraron referencias acerca de estudios sobre el efecto de los hongos entomopatógenos sobre el rendimiento del cultivo de la papa.
El promedio decenal de la temperatura media y de la humedad relativa fluctuó entre 25,4 °C y 97 % respectivamente. No se registró ningún fenómeno meteorológico extremo durante el desarrollo del cultivo.

== CONCLUSIONES ==

• Los hongos entomopatógenos M. anisopliae a la dosis de 1,7 x 1013, L. lecanii a 1,5 x 1013 y B. bassiana a 1,5 x 1013 redujeron la población de T. palmi en el cultivo de la papa.

• M. anisopliae causó patogenicidad superior al 70 % sobre los tres estadios, la patogenicidad de L. lecanii fue buena, entre el 60 y el 66% sobre los tres estadios de T. palmi, mayor sobre los adultos, y B. bassiana presentó una patogenicidad del 53 % sobre ninfas de primer estadio y menos del 47 % sobre los otros dos.

• El mayor porcentaje de mortalidad se obtuvo en el primer estadio de ninfa con valores de 77,7 y 52,9 % para M. anisopliae y B. bassiana, respectivamente.

• El rendimiento en todas las variantes tratadas fue superior al testigo sin tratamiento.

== REFERENCIAS ==

*Alatorre, Raquel: «Hongos entomopatógenos», XI Curso Nacional de Control Biológico, Colegio de Posgraduados, Instituto de Fitosanidad, Guanajuato, México, 2000, pp. 123-134.

*Castiñeiras, A.; J. E. Peña; R. Duncan; L. Osborne: «Potencial of Beauveria bassiana and Paecilomyces fumosoroseus (Deutero mycotina: Hyphomycetes) as Biological Control Agents of Thrips palmi (Thysanoptera: Thripidae)», Florida Entomologist 79 (3): 458- 461, EE. UU., 1996.

*Ciba-Geigy: Manual para ensayos de campo en protección vegetal, Werner Püntener, División Agricultura, 2 ed. CIBA-GEIGY, Suiza, 1981. Cuthbertson, A. G.; J. P. North; K. F. Walters: «Effect of Temperature and Host Plant Leaf Morphology on the Efficacy of Two Entomopathogenic Biocontrol Agents of Thrips palmi (Thysanoptera: Thripidae)», Bull. Entomol. Res. 95 (4): 321-327, Inglaterra, 2005.

*Ehident, J.; J. H. Guarín: «Estudio de la patogenicidad de seis aislamientos de Beauveria spp. (Deuteromycotina: Hyphomycetes) sobre adultos de Thrips palmi Karny (Thysanoptera: Thripidae)», Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria Corpoica, 2003.

*Elósegui, O.; A. I. Elizondo: «Evaluación microbiológica in vitro de mezclas de especies de hongos entomopatógenos, ingredientes activos de bioplaguicidas cubanos», Fitosanidad 14 (2): 103-109, La Habana, 2010.

*Hernández, C.: «La aplicación de productos fitosanitarios. Selectividad ecológica y reducción de la contaminación» Curso Internacional Manejo de Plagas en Sistemas Agrícolas, Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal, La Habana, 15 al 29 de octubre de 2010.

*Jiménez, S. F.; J. Cortiñas; D. López: «Distribución temporal y espacial y consideraciones para el monitoreo de Thrips palmi en papa en Cuba», Manejo Integrado de Plagas 57: 54-57, Costa Rica, 2000.

*Kaya, H. K.; L. A. Lacey: «Introduction to Microbial Control», Field Manual of Techniques in Invertebrate Pathology: Application and Evaluation of Pathogens for Control of Insects and Other Invertebrate Pests, Kluwer Academic Publishers, EE. UU. 2000, pp. 1-4. Minag: Instructivo técnico para el cultivo de la papa. Campaña 2003- 2004, Minag, Cuba, 2003.

*Murguido, C. A.; A. I. Elizondo; E. Peña: «Control químico de Thrips palmi Karny en el cultivo de la papa (Solanum tuberosum L.)», Fitosanidad 6 (1): 55-60, La Habana, 2002.

*Olivares, S. E.: Paquete de diseños experimentales. Facultad Agronómica, Universidad Autónoma de Nuevo León (FAUANL), Versión 2.5, México, 1994.

*Poprawski, T. J.; S. P. Wraight: «Application and Evaluation of Entomopathogens in Vegetable Row Crops: Potatoes», Field Manual of Techniques in Invertebrate Athology: Application and Evaluation of Pathogens for Control of Insects and Other Invertebrate Pests Kluwer Academic Publishers, EE. UU., 2000, pp. 371-388.

*Salomón, J. L.; J. Castillo; A. Estévez; Y. Quiñónez; M. Cordero; U. Ortiz; E. Díaz; R. Tejeda; B. Araujo; O. Céspedes: «Estudio de la composición de calibres en variedades de papa (Solanum tuberosum, L.) importadas para la producción de tubérculos-semilla nacional en Cuba», Resúmenes del Taller de Mejoramiento Genético de los Cultivos, XIV Congreso Científico INCA, noviembre 9-12, 2004, p. 176.

*Trujillo, Z.; R. Pérez; D. Borroto; E. Concepción: «Efectividad de hongos entomopatógenos y Bacillus thuringiensis sobre Thrips palmi Karny en el cultivo del pepino», Fitosanidad 7 (4): 13-18, La Habana, 2003.

*Vázquez, L. L.; C. A. Murguido; A. I. Elizondo; O. Elósegui; F. J. Morales: Control biológico de la mosca blanca Bemisia tabaco, CIAT no. 355, Colombia, CIAT, 2007.

== Fuentes ==
* [http://www.inisav.cu Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal] 

[[category:Agronomía]][[category:Fitopatología]][[Category:Hongos]]

Archivo:Fig 2 patoge..JPG

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Claudiacamue:

== Sumario ==

== Estado de copyright: ==

== Fuente: ==

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== Fuente: ==

Moluscos en la agricultura

2014-09-18T18:55:04Z

Claudiacamue:

{{Definición
|nombre= Moluscos en la agricultura
|imagen=Moluscos.jpg
|tamaño=200px
|concepto=
}}
'''Los [[caracoles]] y [[babosas]]''' son peligrosos por diferentes razones, por ser plagas voraces ya que pueden consumir entre el 30 y el 50% de su peso en una sola noche; son polífagas y prefieren consumir material verde y tierno, aunque también consumen rastrojos y todo tipo de residuo animal o vegetal que se encuentre en el suelo; son hermafroditas, consecuentemente todos tienen la capacidad de reproducirse y poner huevos en un número que va desde 100 a 550, según las especies; son longevos, viven aproximadamente de 9 a 18 meses, por lo tanto pueden reducir su capacidad biológica al mínimo, a la espera de mejores condiciones agro climáticas; son vehiculizadoras, su cuerpo está compuesto entre 85-90% por agua, por lo tanto son capaces de llevar diferentes virus, bacterias y hongos que transmiten a las plantas a través de mucus y de su aparato bucal masticador.

== Importancia de los caracoles y babosas en la agricultura. ==
Las condiciones agroclimáticas que predisponen la aparición y multiplicación de babosas y caracoles son de tipo climáticas (alta humedad del aire, alto contenido de humedad en el suelo y temperaturas medias entre 15-18 °C, aunque, se obse rvan poblaciones de caracoles y babosas en julio y agosto, siempre con la influencia de las lluvias y temperaturas de hasta 28 y 29 °C).
Existen condiciones de suelos con contenidos medio a alto de materia orgánica, buena estructura y alta capacidad de retención de humedad, que permiten la proliferación de estos moluscos, los sistemas de siembras como las labranzas reducidas y especialmente la siembra directa aseguran un mayor contenido de humedad y una adecuada cobertura en el suelo; lo cual mejora las condiciones para la aparición de la plaga.
Los caracoles y las babosas ovipositan en el suelo y entre ellos son importantes para la agricultura Praticolella griseola, Opeas pumilum, Leidyula floridana (Fig. 1), Bradybaena similaris, Subulina octona, Sarasinula plebeia, Rumina decolata, Succinea sagra, Zachrysia auricoma (D'ávila y Bessa, 2005; Trujillo, 2003). Estos individuos suelen proliferar en los períodos lluviosos incluidos, por tanto, los meses de mayo a octubre (Oliva, 2004) en cualquiera de estos meses puede producirse la cópula.

[[Archivo:moluscos_agri.jpg]]

Figura 1. Algunas especies importantes de babosas y caracoles en los cultivos
cubanos: A-Praticolella griseola, B- Opeas pumilum, C- Leidyula floridana.
Por lo general, el apareamiento se produce cuando dos individuos se encuentran y llevan a cabo un cortejo que incluye movimiento en círculos, contacto bucal y entrelazamiento de los cuerpos. Después de la cópula se produce una fecundación mutua, pues son hermafroditas (caracoles); los individuos depositan los huevos en el suelo u otros lugares húmedos y protegidos (Monge -Nágera, 1997).

== Formas de muestreo. ==
La presencia de moluscos en sustratos, materia orgánica y capa vegetal podrán detectarse a través de dos métodos.

== Tamizado húmedo. ==
De la muestra total obtenida se separa 1 kg representativo, se separan de la tierra las conchas grandes, posteriormente la muestra se tamiza con cribas de abertura de 2 y 5 mm, que se colocan sobre una cubeta y se lavan con agua. En el tamiz de 5 mm se podrán colectar los caracoles juveniles y en el 2 mm los huevos de caracoles y de babosas (Coney et al. 1981 citado por Naranjo y Gómez, 2006).

== Trampas de saco. ==
Se coloca sobre el suelo, sustrato o materia orgánica, un saco de yute empapado y doblado varias veces, se cubre con dos capas de piedras, siempre tratando de que quede espacio para la entrada de los moluscos; la primera capa es de piedras pequeñas, las siguientes capas se hacen con rocas planas grandes. La trampa debe ser poco pesada para permitir la entrada de los
caracoles y babosas debajo de ella, la circulación del aire y para mantenerla sombreada. Es necesario mantener la trampa y el suelo húmedos durante 15 días. Estas trampas se examinan cada tres días, durante 15 días y se cuentan los moluscos que aparezcan por especie.

== Procesamiento de los resultados y recomendaciones. ==
La cantidad total de los moluscos encontrados se reportara por gramos de muestra.
Para su proliferación los caracoles y babosas requieren de temperaturas por debajo de 26 °C y humedad por encima de 70%, aunque estos organismos son capaces, bajo condiciones extremas, de mantenerse en estivación (hibernación). Por esta razón un método eficaz de control es la solarización y uso de colector solar.

== Referencias ==
*Andrews, K.L. & Huezo, A. Relación entre la densidad poblacional de la babosa Sarasinula (=Vaginulus) plebeius y el daño del frijol común, Phaseolus vulgaris”. Turrialba 33 (2): 165 p. 1983.
*Coney A.C., Wallace A. T. y Bohannan R. 1981. A method of collecting minute land snails. The Nautilus, (1):43-44. 1995
*D'ávila, Sthefane; Bessa, E.C.A. Influência do substrato sobre a reprodução de Subulina octona (Brugüière) (Mollusca, Subulinidae), sob condições de laboratório. Rev. Bras. Zool. vol.22 no.1 Curitiba Mar. 2005.
*González, G. A.; Internet; Nuevas plagas en siembra directa Babosas y Caracoles [en línea]. Disponible en: \\Rizobacter Argentina S_A. htm. 2000.
*Matamoros Torres, Michel. Caracoles y Babosas: Principales especies, daños y manejo. Conferencia Impartida en Curso de Plagas Urbanas y Domésticas. INISAV. 2007.
*Monje -Nágera, Julián. Moluscos de suelo como plagas agrícolas y cuarentenarias. X Congreso Nacional Agronómico / II Congreso de Suelos. 1996.
*Naranjo García, Edna y Gómez Espinosa, Catalina. Técnicas de muestreo para manejadores de recursos naturales. Los Organismos. Moluscos.Departamento de Zoología, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México. México. 29 pp. 2006
*Oliva Olivera, Wilfredo. Variación en las comunidades de moluscos terrestres de la Sierra Pan de Azúcar, Viñales. Tesis en opción al Título Académico de Master en Ecología y Sistemática Aplicada. Instituto de Ecología y Sistemática. 62 p. 2004.
*Trujillo González, Zoila. Caracoles de Importancia en la Jardinería y sus medidas de lucha Plegable. INISAV. Ciudad de la Habana. 1p. 2003.
*Krull W. H. y Mapes C. R. 1951. Studies on the biology of Dicrocoelium dendriticumdendriticum (Rudolphi, 1819) Loos, 1899 (Trematoda:
Dicrocoeliidae), including its relation to the intermediate host, Cionella lubrica (Müller). The Cornell Veterinarian, 41(3).

== Fuentes ==
* [http://www.inisav.cu Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal] 

[[Category:Comportamiento_animal]]

Bacilos en el control de fitopatógenos

2014-09-18T18:49:55Z

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== Introducción ==

La demanda creciente de una producción agrícola estable, para alimentar a una población mundial en ascenso requiere el control de los [[fitopatógenos]] que reducen sustancialmente el rendimiento de los diferentes cultivos.
Históricamente las prácticas tradicionales para el control de enfermedades se basaban en el desarrollo de variedades resistentes y la aplicación de plaguicidas, sin embargo el uso indiscriminado de estos productos ha provocado severos daños al ambiente, a la salud humana y la aparición de patógenos resistentes o fungorresistencia.
En el sistema de producción intensivo la protección contra factores biológicos que influyen de manera adversa en la eficiencia de un cultivo tiene gran importancia. El elevado costo de los plaguicidas, el desarrollo de resistencia de los patógenos a los fungicidas, las restricciones gubernamentales al uso de los químicos, el interés en proteger el medio ambiente, entre otras han incentivado desde hace muchos años la necesidad de encontrar métodos de control alternativos.
Una de estas alternativas es el [[control biológico]], en el cual se emplean diferentes agentes para reducir los daños causados por los patógenos de las plantas. Dentro de los antagonistas empleados para el control biológico tenemos: [[bacterias]], [[hongos]], [[nematodos]], protozoos y [[virus]]. Los antagonistas interfieren con los patógenos a través de mecanismos como: la antibiosis, competencia y parasitismo, los cuales no son mutuamente excluyentes (Cook, 1993).

== Las bacterias en el control biológico ==

Las bacterias pertenecientes al género Bacillus han sido empleadas con éxito en diferentes países para alcanzar este propósito, son consideradas microorganismos seguros y tienen la capacidad de sintetizar diversas sustancias para uso agronómico e industrial. Muchos de estos Bacillus son habitantes del suelo y pueden ser encontradas en diferentes ambientes, proporcionan a las plantas protección contra diferentes patógenos a través de diferentes modos de acción. La formación de esporas les otorga una alta viabilidad y resistencia a la desecación y al calor y se pueden formular en productos estables por largos periodos de tiempo. Estas características han propiciado el desarrollo de productos biológicamente activos basados en las especies de Bacillus o sus metabolitos como alternativa a los métodos químicos para el control de enfermedades en las plantas.

== Acción y estado del conocimiento de los bacilos ==

Muchas especies de Bacillus incluyendo a B. cereus, B. subtilis, B. mycoides, B. pumilus entre otras suprimen el crecimiento y desarrollo de diferentes patógenos fúngicos como [[Rhizoctonia]], [[Sclerotinia]], [[Fusarium]], [[Gaeummanomyces]], [[Nectria]], [[Pythium]] y [[Phytophthora]] (Sadfi et al., 2002). Las bacterias antagonistas ejercen sus efectos principalmente por la producción de antibióticos con propiedades antifúngicas. Muchas de estas sustancias han sido caracterizadas e identificadas como antibióticos peptidicos. Los péptidos antifungicos producidos por las especies de Bacillus incluyen: micobacilinas, iturinas, surfactinas, micosubtilisinas, bacilomicinas, fungistatinas y subporinas. La mayoría de estos antibióticos son péptidos cíclicos compuestos totalmente de amino ácidos, pero algunos pueden contener otros residuos. Sin embargo muy pocos péptidos tienen estructura lineal (Sadfi et al., 2002).
Dentro de las bacterias antagonistas más estudiadas se encuentra Bacillus subtilis, la cual se destaca en el control de enfermedades del filoplano y en post cosecha. B. subtilis es efectivo en la prevención y control de enfermedades causadas por varias especies de patógenos. Actúa inhibiendo la germinación de las esporas y el crecimiento del tubo germinativo y micelial de los patógenos, bloqueando al ataque del patógeno en la superficie foliar por la formación de una zona de inhibición y también por inducción de resistencia en el hospedero. Las especies del género Bacillus también son consideradas promotoras del crecimiento vegetal.
Existen en el mercado internacional productos registrados a base de esta bacteria en cultivos como la [[uva]], [[manzana]], [[pera]], [[cucurbitáceas]],[[ hortalizas]], [[crucíferas]], [[pimiento]], [[tomate]], [[cebolla]], [[zanahoria]], plantas ornamentales entre otras. Productos formulados a partir de Bacillus subtilis son utilizados en los EUA desde 1983, para el tratamiento de las semillas, aplicaciones foliares y el suelo (D’ Agostino y Morandi, 2009).
No obstante los resultados positivos en relación al antagonismo de Bacillus a los hongos fitopatógenos, el control de enfermedades no es satisfactorio para todos los patosistemas y muchos deben ser probados en el campo (Shoda, 2000).

== Algunas consideraciones acerca del uso de los bacilos ==

Las interacciones entre los microorganismos y los factores bióticos y abióticos influyen en la actividad de Bacillus. Son probables respuestas desiguales entre los tratamientos lo que refleja la interferencia de estas variables. La seguridad y eficacia de su utilización se determinaran por el éxito de las cepas introducidas en el ambiente, por lo cual se necesitan estudios específicos en las condiciones de cada región o país para garantizar la eficiencia de los antagonistas (McSpadden Gardener, 2004).
La utilización de agentes de [[control biológico]] debe estar relacionada con el manejo integrado para que éstos tengan éxito. Los productos comerciales a base de Bacillus pueden servir como una herramienta de control de [[fitopatógenos]] en rotación con otros [[fungicidas]] químicos en cultivos convencionales. Son también alternativas de control de enfermedades en cultivos orgánicos donde la oferta de productos es escasa (Maffia y Mizubuti, 2005).
Jacobsen et al., (2004) evaluaron la importancia de la utilización de Bacillus spp. en el manejo integrado de enfermedades, incluso en el manejo de resistencia. Los autores enfatizaron la necesidad de la evaluación de estos organismos en conjunto con otros métodos de control, como cultivares resistentes, control cultural, reducción del uso de [[agrotóxicos]] y con otros agentes de biocontrol.

== Productos comerciales a base de bacilos ==

Dos ejemplos de productos comerciales registrados a partir de especies de Bacillus son: Serenade® (Bacillus subtilis cepa QST 713) y Sonata® (Bacillus pumilus cepa QST 808) producidos por la empresa Agraquest Inc., ambos productos están registrados por la EPA (Enviromental Protection Agency) de los Estados Unidos de América (EPA, 2008).
Serenade® es un producto recomendado para mancha bacteriana, oídio y pudrición ácida en uva, Sigatoka negra en banano, oídio y mancha prieta en tomate y pimentón, antracnosis en mango, pudrición de [[Sclerotinia]] en lechuga, pudrición de [[Erwinia]] en [[manzana]] y [[pera]], entre otras. Está registrado en Chile, EUA, México, Nueva Zelandia, Puerto Rico, Costa Rica, Japón, Suiza, Argentina, Francia, Italia, Ecuador, Perú, Israel, Filipinas, Guatemala y Honduras (Edgecomb y Manker, 2007).
En el caso del producto Sonata® está registrado en los EUA. Los cultivos y enfermedades para los cuales está recomendado son: oídio en [[tomate]], [[pimentón]], [[uva]], [[cucurbitáceas]], [[fresa]], [[lechuga]], [[manzana]] y [[pera]] (Edgecomb y Manker, 2007).

==Referencias==

*Cook, R. Annu. Rev. Phytopathology. 31: 53-80. 1993.
*D’ Agostino, F. & Morandi, M. Biocontrole de doenças de plantas: Uso e perspectivas: 299- 316. 2009.
*Edgecomb, D. & Manker, D. Anais, IX. Reunião Brasileira sobre Controle Biológico de Doenças em Plantas, Campinas SP. 2007 (Resumo).
*EPA – http:// www. Epa.gov/pesticides/ biopesticides.htm (2008).
*Jacobsen, B.; Zidack, N.; Larson, B. Phytopathology 94:1272- 1275. 2004.
*Maffia, L. & Mizubuti, E. Controle alternative de fungos. pp 269- 294. 2005.
*McSpadden Gardener, B. Phytopathology 94: 1252- 1258. 2004.
*Sadfi, N.; Cherif, M.; Boudabbous, A.; Belanger, R. Ann. Microbiol. 52: 323- 337. 2002.
*Shoda, M. Journal of Bioscience and Bioengineering 89: 515- 521. 2000.

== Fuentes ==

* [http://www.inisav.cu Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal] 

[[Category:Agronomía]]

Moluscos en la agricultura

2014-01-17T16:18:09Z

Claudiacamue:

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}}
'''Los [[caracoles]] y [[babosas]]''' son peligrosos por diferentes razones, por ser plagas voraces ya que pueden consumir entre el 30 y el 50% de su peso en una sola noche; son polífagas y prefieren consumir material verde y tierno, aunque también consumen rastrojos y todo tipo de residuo animal o vegetal que se encuentre en el suelo; son hermafroditas, consecuentemente todos tienen la capacidad de reproducirse y poner huevos en un número que va desde 100 a 550, según las especies; son longevos, viven aproximadamente de 9 a 18 meses, por lo tanto pueden reducir su capacidad biológica al mínimo, a la espera de mejores condiciones agro climáticas; son vehiculizadoras, su cuerpo está compuesto entre 85-90% por agua, por lo tanto son capaces de llevar diferentes virus, bacterias y hongos que transmiten a las plantas a través de mucus y de su aparato bucal masticador.

== Importancia de los caracoles y babosas en la agricultura. ==
Las condiciones agroclimáticas que predisponen la aparición y multiplicación de babosas y caracoles son de tipo climáticas (alta humedad del aire, alto contenido de humedad en el suelo y temperaturas medias entre 15-18 °C, aunque, se obse rvan poblaciones de caracoles y babosas en julio y agosto, siempre con la influencia de las lluvias y temperaturas de hasta 28 y 29 °C).
Existen condiciones de suelos con contenidos medio a alto de materia orgánica, buena estructura y alta capacidad de retención de humedad, que permiten la proliferación de estos moluscos, los sistemas de siembras como las labranzas reducidas y especialmente la siembra directa aseguran un mayor contenido de humedad y una adecuada cobertura en el suelo; lo cual mejora las condiciones para la aparición de la plaga.
Los caracoles y las babosas ovipositan en el suelo y entre ellos son importantes para la agricultura Praticolella griseola, Opeas pumilum, Leidyula floridana (Fig. 1), Bradybaena similaris, Subulina octona, Sarasinula plebeia, Rumina decolata, Succinea sagra, Zachrysia auricoma (D'ávila y Bessa, 2005; Trujillo, 2003). Estos individuos suelen proliferar en los períodos lluviosos incluidos, por tanto, los meses de mayo a octubre (Oliva, 2004) en cualquiera de estos meses puede producirse la cópula.

[[Archivo:moluscos_agri.jpg]]

Figura 1. Algunas especies importantes de babosas y caracoles en los cultivos
cubanos: A-Praticolella griseola, B- Opeas pumilum, C- Leidyula floridana.
Por lo general, el apareamiento se produce cuando dos individuos se encuentran y llevan a cabo un cortejo que incluye movimiento en círculos, contacto bucal y entrelazamiento de los cuerpos. Después de la cópula se produce una fecundación mutua, pues son hermafroditas (caracoles); los individuos depositan los huevos en el suelo u otros lugares húmedos y protegidos (Monge -Nágera, 1997).

== Formas de muestreo. ==
La presencia de moluscos en sustratos, materia orgánica y capa vegetal podrán detectarse a través de dos métodos.

== Tamizado húmedo. ==
De la muestra total obtenida se separa 1 kg representativo, se separan de la tierra las conchas grandes, posteriormente la muestra se tamiza con cribas de abertura de 2 y 5 mm, que se colocan sobre una cubeta y se lavan con agua. En el tamiz de 5 mm se podrán colectar los caracoles juveniles y en el 2 mm los huevos de caracoles y de babosas (Coney et al. 1981 citado por Naranjo y Gómez, 2006).

== Trampas de saco. ==
Se coloca sobre el suelo, sustrato o materia orgánica, un saco de yute empapado y doblado varias veces, se cubre con dos capas de piedras, siempre tratando de que quede espacio para la entrada de los moluscos; la primera capa es de piedras pequeñas, las siguientes capas se hacen con rocas planas grandes. La trampa debe ser poco pesada para permitir la entrada de los
caracoles y babosas debajo de ella, la circulación del aire y para mantenerla sombreada. Es necesario mantener la trampa y el suelo húmedos durante 15 días. Estas trampas se examinan cada tres días, durante 15 días y se cuentan los moluscos que aparezcan por especie.

== Procesamiento de los resultados y recomendaciones. ==
La cantidad total de los moluscos encontrados se reportara por gramos de muestra.
Para su proliferación los caracoles y babosas requieren de temperaturas por debajo de 26 °C y humedad por encima de 70%, aunque estos organismos son capaces, bajo condiciones extremas, de mantenerse en estivación (hibernación). Por esta razón un método eficaz de control es la solarización y uso de colector solar.

== Referencias ==
*Andrews, K.L. & Huezo, A. Relación entre la densidad poblacional de la babosa Sarasinula (=Vaginulus) plebeius y el daño del frijol común, Phaseolus vulgaris”. Turrialba 33 (2): 165 p. 1983.
*Coney A.C., Wallace A. T. y Bohannan R. 1981. A method of collecting minute land snails. The Nautilus, (1):43-44. 1995
*D'ávila, Sthefane; Bessa, E.C.A. Influência do substrato sobre a reprodução de Subulina octona (Brugüière) (Mollusca, Subulinidae), sob condições de laboratório. Rev. Bras. Zool. vol.22 no.1 Curitiba Mar. 2005.
*González, G. A.; Internet; Nuevas plagas en siembra directa Babosas y Caracoles [en línea]. Disponible en: \\Rizobacter Argentina S_A. htm. 2000.
*Matamoros Torres, Michel. Caracoles y Babosas: Principales especies, daños y manejo. Conferencia Impartida en Curso de Plagas Urbanas y Domésticas. INISAV. 2007.
*Monje -Nágera, Julián. Moluscos de suelo como plagas agrícolas y cuarentenarias. X Congreso Nacional Agronómico / II Congreso de Suelos. 1996.
*Naranjo García, Edna y Gómez Espinosa, Catalina. Técnicas de muestreo para manejadores de recursos naturales. Los Organismos. Moluscos.Departamento de Zoología, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México. México. 29 pp. 2006
*Oliva Olivera, Wilfredo. Variación en las comunidades de moluscos terrestres de la Sierra Pan de Azúcar, Viñales. Tesis en opción al Título Académico de Master en Ecología y Sistemática Aplicada. Instituto de Ecología y Sistemática. 62 p. 2004.
*Trujillo González, Zoila. Caracoles de Importancia en la Jardinería y sus medidas de lucha Plegable. INISAV. Ciudad de la Habana. 1p. 2003.
*Krull W. H. y Mapes C. R. 1951. Studies on the biology of Dicrocoelium dendriticumdendriticum (Rudolphi, 1819) Loos, 1899 (Trematoda:
Dicrocoeliidae), including its relation to the intermediate host, Cionella lubrica (Müller). The Cornell Veterinarian, 41(3).

== Fuentes ==
[[Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal]]

[[Category:Comportamiento_animal]]

Moluscos en la agricultura

2014-01-13T19:22:42Z

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'''Los caracoles y babosas''' son peligrosos por diferentes razones, por ser plagas voraces ya que pueden consumir entre el 30 y el 50% de su peso en una sola noche; son polífagas y prefieren consumir material verde y tierno, aunque también consumen rastrojos y todo tipo de residuo animal o vegetal que se encuentre en el suelo; son hermafroditas, consecuentemente todos tienen la capacidad de reproducirse y poner huevos en un número que va desde 100 a 550, según las especies; son longevos, viven aproximadamente de 9 a 18 meses, por lo tanto pueden reducir su capacidad biológica al mínimo, a la espera de mejores condiciones agro climáticas; son vehiculizadoras, su cuerpo está compuesto entre 85-90% por agua, por lo tanto son capaces de llevar diferentes virus, bacterias y hongos que transmiten a las plantas a través de mucus y de su aparato bucal masticador.

== Importancia de los caracoles y babosas en la agricultura. ==
Las condiciones agroclimáticas que predisponen la aparición y multiplicación de babosas y caracoles son de tipo climáticas (alta humedad del aire, alto contenido de humedad en el suelo y temperaturas medias entre 15-18 °C, aunque, se obse rvan poblaciones de caracoles y babosas en julio y agosto, siempre con la influencia de las lluvias y temperaturas de hasta 28 y 29 °C).
Existen condiciones de suelos con contenidos medio a alto de materia orgánica, buena estructura y alta capacidad de retención de humedad, que permiten la proliferación de estos moluscos, los sistemas de siembras como las labranzas reducidas y especialmente la siembra directa aseguran un mayor contenido de humedad y una adecuada cobertura en el suelo; lo cual mejora las condiciones para la aparición de la plaga.
Los caracoles y las babosas ovipositan en el suelo y entre ellos son importantes para la agricultura Praticolella griseola, Opeas pumilum, Leidyula floridana (Fig. 1), Bradybaena similaris, Subulina octona, Sarasinula plebeia, Rumina decolata, Succinea sagra, Zachrysia auricoma (D'ávila y Bessa, 2005; Trujillo, 2003). Estos individuos suelen proliferar en los períodos lluviosos incluidos, por tanto, los meses de mayo a octubre (Oliva, 2004) en cualquiera de estos meses puede producirse la cópula.

[[Archivo:moluscos_agri.jpg]]

Figura 1. Algunas especies importantes de babosas y caracoles en los cultivos
cubanos: A-Praticolella griseola, B- Opeas pumilum, C- Leidyula floridana.
Por lo general, el apareamiento se produce cuando dos individuos se encuentran y llevan a cabo un cortejo que incluye movimiento en círculos, contacto bucal y entrelazamiento de los cuerpos. Después de la cópula se produce una fecundación mutua, pues son hermafroditas (caracoles); los individuos depositan los huevos en el suelo u otros lugares húmedos y protegidos (Monge -Nágera, 1997).

== Formas de muestreo. ==
La presencia de moluscos en sustratos, materia orgánica y capa vegetal podrán detectarse a través de dos métodos.

== Tamizado húmedo. ==
De la muestra total obtenida se separa 1 kg representativo, se separan de la tierra las conchas grandes, posteriormente la muestra se tamiza con cribas de abertura de 2 y 5 mm, que se colocan sobre una cubeta y se lavan con agua. En el tamiz de 5 mm se podrán colectar los caracoles juveniles y en el 2 mm los huevos de caracoles y de babosas (Coney et al. 1981 citado por Naranjo y Gómez, 2006).

== Trampas de saco. ==
Se coloca sobre el suelo, sustrato o materia orgánica, un saco de yute empapado y doblado varias veces, se cubre con dos capas de piedras, siempre tratando de que quede espacio para la entrada de los moluscos; la primera capa es de piedras pequeñas, las siguientes capas se hacen con rocas planas grandes. La trampa debe ser poco pesada para permitir la entrada de los
caracoles y babosas debajo de ella, la circulación del aire y para mantenerla sombreada. Es necesario mantener la trampa y el suelo húmedos durante 15 días. Estas trampas se examinan cada tres días, durante 15 días y se cuentan los moluscos que aparezcan por especie.

== Procesamiento de los resultados y recomendaciones. ==
La cantidad total de los moluscos encontrados se reportara por gramos de muestra.
Para su proliferación los caracoles y babosas requieren de temperaturas por debajo de 26 °C y humedad por encima de 70%, aunque estos organismos son capaces, bajo condiciones extremas, de mantenerse en estivación (hibernación). Por esta razón un método eficaz de control es la solarización y uso de colector solar.

== Referencias ==
*Andrews, K.L. & Huezo, A. Relación entre la densidad poblacional de la babosa Sarasinula (=Vaginulus) plebeius y el daño del frijol común, Phaseolus vulgaris”. Turrialba 33 (2): 165 p. 1983.
*Coney A.C., Wallace A. T. y Bohannan R. 1981. A method of collecting minute land snails. The Nautilus, (1):43-44. 1995
*D'ávila, Sthefane; Bessa, E.C.A. Influência do substrato sobre a reprodução de Subulina octona (Brugüière) (Mollusca, Subulinidae), sob condições de laboratório. Rev. Bras. Zool. vol.22 no.1 Curitiba Mar. 2005.
*González, G. A.; Internet; Nuevas plagas en siembra directa Babosas y Caracoles [en línea]. Disponible en: \\Rizobacter Argentina S_A. htm. 2000.
*Matamoros Torres, Michel. Caracoles y Babosas: Principales especies, daños y manejo. Conferencia Impartida en Curso de Plagas Urbanas y Domésticas. INISAV. 2007.
*Monje -Nágera, Julián. Moluscos de suelo como plagas agrícolas y cuarentenarias. X Congreso Nacional Agronómico / II Congreso de Suelos. 1996.
*Naranjo García, Edna y Gómez Espinosa, Catalina. Técnicas de muestreo para manejadores de recursos naturales. Los Organismos. Moluscos.Departamento de Zoología, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México. México. 29 pp. 2006
*Oliva Olivera, Wilfredo. Variación en las comunidades de moluscos terrestres de la Sierra Pan de Azúcar, Viñales. Tesis en opción al Título Académico de Master en Ecología y Sistemática Aplicada. Instituto de Ecología y Sistemática. 62 p. 2004.
*Trujillo González, Zoila. Caracoles de Importancia en la Jardinería y sus medidas de lucha Plegable. INISAV. Ciudad de la Habana. 1p. 2003.
*Krull W. H. y Mapes C. R. 1951. Studies on the biology of Dicrocoelium dendriticumdendriticum (Rudolphi, 1819) Loos, 1899 (Trematoda:
Dicrocoeliidae), including its relation to the intermediate host, Cionella lubrica (Müller). The Cornell Veterinarian, 41(3).

== Fuentes ==
[[Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal]]

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== Fuentes ==
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